{"id":11463,"date":"2023-07-14T12:52:03","date_gmt":"2023-07-14T12:52:03","guid":{"rendered":"https:\/\/www.naturenb.ca\/?p=11463"},"modified":"2023-09-20T13:07:35","modified_gmt":"2023-09-20T13:07:35","slug":"nouveaux-tenias-infectant-les-poissons-du-nouveau-brunswick-et-la-necessite-dune-science-citoyenne","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/www.naturenb.ca\/fr\/2023\/07\/14\/nouveaux-tenias-infectant-les-poissons-du-nouveau-brunswick-et-la-necessite-dune-science-citoyenne\/","title":{"rendered":"Naturaliste du N.-B. en vedette : Nouveaux t\u00e9nias infectant les poissons du Nouveau-Brunswick et la n\u00e9cessit\u00e9 d’une science citoyenne !"},"content":{"rendered":"\n

Naturaliste du N.-B. en vedette : Nouveaux t\u00e9nias infectant les poissons du Nouveau-Brunswick et la n\u00e9cessit\u00e9 d’une science citoyenne !<\/h1>\n\n\n\n

De Megan Fraser<\/p>\n\n\n\n

Les parasites sont des organismes qui vivent sur ou \u00e0 l’int\u00e9rieur d’un organisme h\u00f4te ; l’h\u00f4te subit des dommages et le parasite en profite (Loker & Hofkin 2015). Le parasitisme est un mode de vie symbiotique commun et les parasites sont pr\u00e9sents dans tous les r\u00e8gnes de la vie, sous de nombreuses formes et tailles. Presque toutes les plantes et les animaux sont les h\u00f4tes d’un ou de plusieurs organismes parasitaires. L’\u00e9tude des parasites et de leurs h\u00f4tes est connue sous le nom de parasitologie, et l’\u00e9tude des vers parasites en particulier est appel\u00e9e helminthologie. Les vers parasites appartiennent \u00e0 un groupe de parasites appel\u00e9 \u00ab helminthes \u00bb, qui comprend des classes telles que les n\u00e9matodes (vers ronds), les tr\u00e9matodes (douves) et les cestodes (t\u00e9nias). Les helminthes peuvent \u00eatre des ectoparasites, sp\u00e9cialis\u00e9s dans la vie \u00e0 l’ext\u00e9rieur de leur h\u00f4te, ou des endoparasites, qui vivent \u00e0 l’int\u00e9rieur de leur h\u00f4te. Pour le non-initi\u00e9, le mot \u00ab t\u00e9nia \u00bb \u00e9voque de nombreuses \u00e9motions, principalement le d\u00e9go\u00fbt et la r\u00e9pulsion. Aussi \u00e9tranges et d\u00e9rangeants que soient les t\u00e9nias, ils sont pas mal fascinants. Non seulement les t\u00e9nias privent leur h\u00f4te de leurs nutriments, mais certaines esp\u00e8ces modifient \u00e9galement le comportement, le syst\u00e8me immunitaire et la capacit\u00e9 de reproduction de leur h\u00f4te. Les poissons ne sont pas \u00e9trangers aux infections helminthiques, puisqu’on estime que 30 000 esp\u00e8ces d’helminthes infectent les poissons dans le monde entier (Jyrwa et al. 2016) !<\/p>\n\n\n\n

J’ai eu l’occasion de me plonger dans le domaine de l’helminthologie apr\u00e8s que plusieurs t\u00e9nias pr\u00e9lev\u00e9s sur des poissons du Nouveau-Brunswick ont \u00e9t\u00e9 envoy\u00e9s au parasitologue Michael Duffy (UNBF) et m’ont \u00e9t\u00e9 envoy\u00e9s pour identification. L’identification des esp\u00e8ces de t\u00e9nias est difficile, surtout au stade larvaire. Les t\u00e9nias ont peu de caract\u00e9ristiques morphologiques distinctives, et certaines esp\u00e8ces infectent plusieurs poissons h\u00f4tes, de sorte que l’identit\u00e9 de l’h\u00f4te ne peut pas \u00eatre utilis\u00e9e pour l’identification sp\u00e9cifique du cestode. L’identification au niveau de l’esp\u00e8ce est encore plus compliqu\u00e9e par le fait que de nombreux t\u00e9nias n’ont pas encore \u00e9t\u00e9 d\u00e9couverts et nomm\u00e9s !<\/p>\n\n\n\n

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Figure 1. T\u00e9nias segment\u00e9s pr\u00e9lev\u00e9s sur des h\u00f4tes du chabot visqueux dans le nord du Nouveau-Brunswick en 2017. Les sp\u00e9cimens ont \u00e9t\u00e9 recueillis par le Dr Michelle Gray et son \u00e9quipe de recherche. Cr\u00e9dit photo : Megan Fraser 2022.<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n
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Figure 2. T\u00e9nias non segment\u00e9s extraits d’un lac du sud du Nouveau-Brunswick en 2021 et 2022. Les sp\u00e9cimens de 2021 ont \u00e9t\u00e9 d\u00e9couverts par Ben Andrews et Sarah Van De Reep. Photo : Ben Andrews 2021 (\u00e0 droite) et Megan Fraser 2022 (\u00e0 gauche).<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n

Des t\u00e9nias ont r\u00e9cemment \u00e9t\u00e9 pr\u00e9lev\u00e9s sur des poissons provenant de deux endroits distincts dans le Nouveau-Brunswick (Fraser et al. 2023). Le premier groupe a \u00e9t\u00e9 pr\u00e9lev\u00e9 en 2017 sur des chabots visqueux dans le nord du Nouveau-Brunswick, au cours d’enqu\u00eates non reli\u00e9es sur les impacts de la gestion foresti\u00e8re sur la sant\u00e9 des poissons (White 2020, Negrazis et al. 2022). Le deuxi\u00e8me ensemble a \u00e9t\u00e9 recueilli en 2021, apr\u00e8s avoir \u00e9t\u00e9 lib\u00e9r\u00e9 de son h\u00f4te au cours d’une \u00e9tude sur les poissons dans le sud du Nouveau-Brunswick. D’autres de ces t\u00e9nias ont \u00e9t\u00e9 pr\u00e9lev\u00e9s sur des naseux noirs au m\u00eame endroit en 2022. En comparant les sp\u00e9cimens de parasites du nord et du sud, deux caract\u00e9ristiques morphologiques \u00e9taient \u00e9videntes : les vers du nord du Nouveau-Brunswick \u00e9taient segment\u00e9s et relativement courts (figure 1), tandis que les vers du sud du Nouveau-Brunswick n’\u00e9taient pas segment\u00e9s et \u00e9taient relativement longs (figure 2). En raison de ces diff\u00e9rences morphologiques, je savais que j’avais en main deux esp\u00e8ces distinctes de parasites. J’ai donc pr\u00e9lev\u00e9 un petit morceau de l’extr\u00e9mit\u00e9 de chaque ver et j’en ai extrait l’ADN. En comparant l’ADN \u00e0 celui de tous les t\u00e9nias connus disponibles dans une grande base de donn\u00e9es de s\u00e9quences g\u00e9n\u00e9tiques (GenBank), j’ai fait deux d\u00e9couvertes :<\/p>\n\n\n\n

1. Les vers du nord du Nouveau-Brunswick ont 89-92% d’identit\u00e9 partag\u00e9e avec les t\u00e9nias du genre Schistocephalus<\/em>, ce qui confirme que ces vers appartiennent au genre Schistocephalus <\/em>et qu’ils constituent potentiellement une nouvelle esp\u00e8ce.<\/p>\n\n\n\n

2. Les vers du sud du Nouveau-Brunswick pr\u00e9sentent une identit\u00e9 de plus de 99 % avec le t\u00e9nia Ligula intestinalis<\/em>, ce qui a permis l’identification d\u00e9finitive de l’esp\u00e8ce de ce parasite. Ligula intestinalis<\/em> n’avait pas \u00e9t\u00e9 enregistr\u00e9 auparavant au Nouveau-Brunswick. <\/p>\n\n\n\n

Les esp\u00e8ces de Schistocephalus <\/em>sont g\u00e9n\u00e9ralement consid\u00e9r\u00e9es comme des sp\u00e9cialistes de l’\u00e9pinoche \u00e0 trois \u00e9pines et de l’\u00e9pinoche \u00e0 neuf \u00e9pines, mais les vers du nord du Nouveau-Brunswick ont \u00e9t\u00e9 trouv\u00e9s dans le chabot visqueux. Il semble qu’un changement d’h\u00f4te et un \u00e9v\u00e9nement de sp\u00e9ciation non document\u00e9s se soient produits dans le genre Schistocephalus<\/em>, donnant naissance aux vers trouv\u00e9s dans le chabot mince du nord du Nouveau-Brunswick. Il s’agit potentiellement d’une nouvelle esp\u00e8ce et d’une d\u00e9couverte scientifique tr\u00e8s int\u00e9ressante !<\/p>\n\n\n\n

L’absence de rapports pr\u00e9c\u00e9dents sur L. intestinalis<\/em> au Nouveau-Brunswick est notable. Notre identification r\u00e9cente soul\u00e8ve la question de savoir si ce t\u00e9nia a \u00e9t\u00e9 r\u00e9cemment introduit ou s’il a \u00e9t\u00e9 pr\u00e9sent pendant de nombreuses ann\u00e9es sans \u00eatre identifi\u00e9. Ligula intestinalis<\/em> a trois h\u00f4tes au cours de son cycle de vie (Arme & Owen 1968, Szalai et al. 1989, Loot et al. 2002, Biswas & Ash 2021). Elle se reproduit dans l’intestin d’un oiseau piscivore et les \u0153ufs passent avec les f\u00e8ces de l’oiseau dans de l’eau douce. Les \u0153ufs \u00e9closent avant d’\u00eatre mang\u00e9s par de minuscules crustac\u00e9s appel\u00e9s “cop\u00e9podes” ; les cop\u00e9podes infect\u00e9s sont mang\u00e9s par les poissons, les poissons infect\u00e9s sont mang\u00e9s par les oiseaux, et le cycle de vie se r\u00e9p\u00e8te. Les vers Ligula intestinalis<\/em> peuvent devenir tr\u00e8s grands, atteignant jusqu’\u00e0 100 cm de long (Yoneva et al. 2015) ! L’introduction r\u00e9cente de L. intestinalis<\/em> au Nouveau-Brunswick est possible, surtout en raison de la nature tr\u00e8s mobile de l’oiseau h\u00f4te. Cependant, il est \u00e9galement possible que L. intestinalis<\/em> n’ait pas \u00e9t\u00e9 identifi\u00e9 au Nouveau-Brunswick en raison d’un manque d’int\u00e9r\u00eat pour la recherche sur les cestodes. Cette question reste sans r\u00e9ponse.<\/p>\n\n\n\n

Ligula intestinalis<\/em> peut \u00ab castrer parasitairement \u00bb son poisson h\u00f4te. En d’autres termes, l’infection limite fortement la capacit\u00e9 des poissons infect\u00e9s \u00e0 se reproduire. Cet effet de castration est signal\u00e9 chez de nombreuses esp\u00e8ces europ\u00e9ennes de poissons, notamment le chevaine, le gardon, le rotengle, la br\u00e8me, le m\u00e9n\u00e9 et la vandoise, mais il n’a pas \u00e9t\u00e9 bien \u00e9tudi\u00e9 dans les populations de poissons d’Am\u00e9rique du Nord. Les poissons infect\u00e9s peuvent pr\u00e9senter une croissance gonadique faible ou nulle, des tubercules de ponte moins pro\u00e9minents, des niveaux d’hormones sexuelles significativement plus faibles, et peuvent pr\u00e9senter un comportement anormal pendant leur p\u00e9riode de ponte (Orr 1966, Arme & Owen 1968, Carter et al. 2005, Hecker & Karbe 2005, Schabuss 2005, Trubiroha et al. 2009, Trubiroha et al. 2010). Le m\u00e9canisme qui provoque la castration du poisson h\u00f4te est inconnu, mais on suppose qu’il s’agit d’une prot\u00e9ine ou d’une autre mol\u00e9cule activement s\u00e9cr\u00e9t\u00e9e par le parasite ! En laboratoire, mes prochaines \u00e9tapes consisteront \u00e0 collecter les s\u00e9cr\u00e9tions de ces t\u00e9nias et \u00e0 identifier les mol\u00e9cules principales s\u00e9cr\u00e9t\u00e9es. L’identification de ces mol\u00e9cules nous rapprochera, je l’esp\u00e8re, d’une meilleure compr\u00e9hension des m\u00e9canismes qui conduisent \u00e0 la castration parasitaire de leur poisson h\u00f4te.<\/p>\n\n\n\n

Je cherche \u00e0 d\u00e9terminer l’aire de distribution g\u00e9ographique de L. intestinalis<\/em> en surveillant les populations naturelles de poissons au Nouveau-Brunswick ; ce parasite est-il limit\u00e9 aux lacs du sud du Nouveau-Brunswick ou est-il pr\u00e9sent dans l’ensemble de la province ? Il est important de conna\u00eetre l’aire de distribution g\u00e9ographique donn\u00e9 les cons\u00e9quences n\u00e9gatives potentielles des infections par L. intestinalis<\/em> sur la reproduction de l’h\u00f4te, en particulier dans les populations de poissons menac\u00e9es. C’est l\u00e0 que j’ai d\u00e9cid\u00e9 qu’une initiative de science citoyenne serait utile ! Les p\u00eacheurs de loisir trouvent souvent des t\u00e9nias dans les poissons sauvages. En faisant participer le public, j’esp\u00e8re que les p\u00eacheurs r\u00e9cr\u00e9atifs conserveront les t\u00e9nias qu’ils trouvent afin que je puisse les collecter pour les identifier. Si des sp\u00e9cimens correspondent \u00e0 L. intestinalis<\/em>, cela nous donnera des informations pr\u00e9cieuses sur l’aire de distribution du parasite au Nouveau-Brunswick et sur les esp\u00e8ces de poissons qui peuvent servir d’h\u00f4tes. Veuillez contacter Megan Fraser (courriel : mfrase12@unb.ca<\/a>) si vous trouvez des t\u00e9nias pendant que vous p\u00eachez, et la collecte des sp\u00e9cimens sera organis\u00e9e !<\/p>\n\n\n\n

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Figure 3. Naseux noir infect\u00e9 par L. intestinalis<\/em> trouv\u00e9 dans un lac du sud du Nouveau-Brunswick. Photo : Sarah Van De Reep 2021 (en bas \u00e0 gauche) et Megan Fraser 2022 (\u00e0 droite et en haut \u00e0 gauche).<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n

Notre utilisation des collections des p\u00eacheurs r\u00e9cr\u00e9atifs r\u00e9duira la n\u00e9cessit\u00e9 de sacrifier des poissons suppl\u00e9mentaires pour nos propres \u00e9tudes. Au cours du printemps et de l’automne 2023, j’effectuerai une \u00e9tude de plusieurs lacs du Nouveau-Brunswick pour r\u00e9pondre aux questions concernant l’aire de r\u00e9partition du parasite, les poissons h\u00f4tes permissifs et les tendances saisonni\u00e8res de la pr\u00e9valence de l’infection. Les indicateurs morphologiques de l’infection, tels que le gonflement abdominal ou l’\u00e9ruption de t\u00e9nias \u00e0 partir de l’\u00e9vent (l’ouverture par laquelle les \u0153ufs, le sperme et les d\u00e9chets quittent le poisson), nous aideront \u00e0 s\u00e9lectionner les poissons \u00e0 \u00e9chantillonner (figure 3). Pour diagnostiquer un poisson atteint de cette infection, les m\u00e9thodes ant\u00e9rieures n\u00e9cessitaient l’euthanasie et la dissection. Nous modifierons une proc\u00e9dure de diagnostique non fatale et peu invasive de Berger et Aubin-Horth (2018) pour nous permettre de diagnostiquer les poissons infect\u00e9s sans les euthanasier. Notre objectif est de collecter des \u00e9chantillons aupr\u00e8s des p\u00eacheurs r\u00e9cr\u00e9atifs et d’utiliser des techniques de diagnostique non fatales, afin de r\u00e9aliser notre \u00e9tude avec le moins de d\u00e9rangement \u00e9cologique possible. Nos \u00e9tudes apporteront des informations pr\u00e9cieuses au domaine de la parasitologie au Nouveau-Brunswick et aux travaux parasitologiques concernant Ligula intestinalis dans le monde entier !<\/p>\n\n\n\n

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Remerciements :<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Je remercie le Dr Michelle Gray, Ben Andrews et Sarah Van De Reep pour avoir collect\u00e9 les vers solitaires originaux en vue de leur identification. Sans leur int\u00e9r\u00eat et leur curiosit\u00e9, je ne participerais pas \u00e0 cet important projet de recherche. Je remercie le comit\u00e9 de supervision de ma ma\u00eetrise, le Dr Michael Duffy, le Dr Shawn MacLellan et le Dr Michelle Gray pour leurs conseils et leur encadrement. Je remercie \u00e9galement Kerstyn Dobbs, Hannah Lazaris-Decken, Nathanael Moore, Stephanie Scott et Tyler Lynn de l’UNBF pour leur aide en laboratoire, ainsi que Sarah Van De Reep, Becky Graham, Sara Plant, Allain Cassie et John Robinson \u00e0 Parcs Canada pour leur aide sur le terrain.<\/p>\n\n\n\n

Les ressources :<\/strong><\/p>\n\n\n\n

  • Arme, C., & Owen, R. W. 1968. Occurrence and pathology of Ligula intestinalis<\/em> infections in British fishes. The Journal of Parasitology<\/em>, 54<\/em>, 272\u2013280.<\/li>
  • Berger, C. S., & Aubin-Horth, N. 2018. An eDNA-qPCR assay to detect the presence of the parasite Schistocephalus solidus<\/em> inside its Threespine stickleback host. Journal of Experimental Biology<\/em>, 221<\/em>(9), jeb178137.<\/li>
  • Biswas, R., & Ash, A. 2021. Impact of Endocrine Disruption on Host-Parasite Interaction: A Digest from a Cosmopolitan Cestode Model Ligula intestinalis<\/em>. In Proceedings of the Zoological Society. pp. 1-9. Springer India.<\/li>
  • Carter, V., Pierce, R., Dufour, S., Arme, C., & Hoole, D. 2005. The tapeworm Ligula intestinalis<\/em> (Cestoda: Pseudophyllidea) inhibits LH expression and puberty in its teleost host, Rutilus rutilus<\/em>. Reproduction<\/em>, 130<\/em>, 939-945.<\/li>
  • Fraser, M.L., M.A. Gray, K.D.R. Dobbs, B.I. Andrews, S. Van De Reep, M. S. Duffy. 2023. First reports of Ligula intestinalis <\/em>and a Schistocephalus<\/em> sp. infecting small-bodied fish in New Brunswick, Canada. Journal of Parasitology 109:288-295.  DOI: 10.1645\/22-127<\/li>
  • Hecker, M., & Karbe, L. 2005. Parasitism in fish\u2014an endocrine modulator of ecological relevance?. Aquatic Toxicology<\/em>, 72<\/em>, 195-207.<\/li>
  • Jyrwa, D. B., Thapa, S., & Tandon, V. (2016). Helminth parasite spectrum of fishes in Meghalaya, Northeast India: a checklist. Journal of Parasitic Diseases<\/em>, 40<\/em>, 312-329.<\/li>
  • Loker, E., & Hofkin, B. 2015. Parasitology: a conceptual approach. Garland Science, Taylor & Francis Group, LLC. 711 Third Avenue, New York, NY, 10017, USA<\/li>
  • Loot, G., Aulagnier, S., Lek, S., Thomas, F., & Gu\u00e9gan, J. F. 2002. Experimental demonstration of a behavioural modification in a cyprinid fish, Rutilus rutilus<\/em> (L.), induced by a parasite, Ligula intestinalis<\/em> (L.). Canadian Journal of Zoology<\/em>, 80, 738-744.<\/li>
  • Negrazis, L., Kidd, K. A., Erdozain, M., Emilson, E. J., Mitchell, C. P., & Gray, M. A. 2022. Effects of forest management on mercury bioaccumulation and biomagnification along the river continuum. Environmental Pollution<\/em>, 310<\/em>, 119810.<\/li>
  • Orr, T. S. C. 1966. Spawning behaviour of rudd, Scardinius erythrophthalmus<\/em> infested with plerocercoids of Ligula intestinalis<\/em>. Nature<\/em>, 212<\/em>, 736-736.<\/li>
  • Schabuss, M., Gemeiner, M., Gleib, A., Lewis, J. W., Miller, I., M\u00f6stl, E., & Grillitsch, B. 2005. Ligula intestinalis<\/em> infection as a potential source of bias in the bioindication of endocrine disruption in the European chub Leuciscus cephalus<\/em>. Journal of Helminthology<\/em>, 79<\/em>, 91-94.<\/li>
  • Szalai, A. J., Yang, X., & Dick, T. A. 1989. Changes in numbers and growth of Ligula intestinalis <\/em>in the spottail shiner (Notropis hudsonius<\/em>), and their roles in transmission. The Journal of Parasitology<\/em>, 75, 571\u2013576<\/li>
  • Trubiroha, A., Kroupova, H., Wuertz, S., Frank, S. N., Sures, B., & Kloas, W. 2010. Naturally-induced endocrine disruption by the parasite Ligula intestinalis<\/em> (Cestoda) in roach (Rutilus rutilus<\/em>). General and Comparative Endocrinology<\/em>, 166<\/em>, 234-240.<\/li>
  • Trubiroha, A., Wuertz, S., Frank, S. N., Sures, B., & Kloas, W. 2009. Expression of gonadotropin subunits in roach (Rutilus rutilus<\/em>, Cyprinidae) infected with plerocercoids of the tapeworm Ligula intestinalis<\/em> (Cestoda). International Journal for Parasitology<\/em>, 39<\/em>, 1465-1473.<\/li>
  • White, C. F. H. 2020. Fish effects from forest harvest and ectoparasitic copepods in northern New Brunswick. MScF Thesis, University of New Brunswick, 120 pp.<\/li>
  • Yoneva, A., Scholz, T., M?ocicki, D., & Kuchta, R. 2015. Ultrastructural study of vitellogenesis of Ligula intestinalis<\/em> (Diphyllobothriidea) reveals the presence of cytoplasmic-like cell death in cestodes. Frontiers in zoology<\/em>, 12, 1-9.<\/li><\/ul>\n","protected":false},"excerpt":{"rendered":"

    Naturaliste du N.-B. en vedette : Nouveaux t\u00e9nias infectant les poissons du Nouveau-Brunswick et la n\u00e9cessit\u00e9 d’une science citoyenne ! 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